Verdere optimalisatie van het Ford-project voor het gebruik van Next-generation sequencing in de moleculaire diagnostiek. Bachelorproef - Liselotte Vergote.

Slides:



Advertisements
Verwante presentaties
CSI Oldenzaal.
Advertisements

Centrum voor Medische Genetica Diensthoofd prof. dr. A. De Paepe
21.3 PCR-techniek Dubbelstrengs DNA verhitten, resultaat: enkelstrengs DNA Afkoelen Binding complementaire DNA-primers op specifieke plekken los DNA.
basistechnieken van de recombinant-DNA-technologie
PCR basistechnieken in vitro enzymatische amplificatie van DNA
Borstkanker en erfelijkheid
1 Is úw CAO OPTIMAAL? Optimaliseer uw CAO met CAOptimaal® van HS Arbeidsvoorwaarden Optimaliseer uw CAO met CAOptimaal® van HS Arbeidsvoorwaarden Bètaversie.
PCR basistechnieken in vitro enzymatische amplificatie van DNA
Basistechnieken van de recombinant-DNA-technologie door Peter Roels Monitoraat Wetenschappen K.U. Leuven Deel 2.
BRCA diagnose bij familiale borstkanker
LENGTE METEN VAN EEN GENOOM
Hoe gebeurt het kopiëren of de replicatie?
POPULATIE GENETICA WAT IS EEN POPULATIE?.
Nucleïnezuren en DNA-replicatie
DNA Replicatie 1. Origineel DNA molecuul: dubbele streng
Transcriptie en translatie van het DNA
Genspecifieke therapie bij patienten met Cystic Fibrosis
Erfelijkheid.
Optimalisatie van HRMCA toepassingen
1. Individuen vertonen variatie in eigenschappen
DNA micro arrays Heel recente techniek
DNA-amplificatie: PCR Amplicon-detectie: gelectroforese
Cytogenetica Visualiseren van de chromosomen
Thema 8 Moleculaire genetica
Thema 8 Moleculaire genetica
Thema 8 Moleculaire genetica
Thema 8 Moleculaire genetica
BIO 42 Replicatie “hoe het DNA in een cel wordt verdubbeld”
Replicatie van de telomeren
Micro-array analyse.
RFLPs SNPs Micro-array
Hybridisatie Blotten Probes maken Sequencen
BIO 42 Replicatie en PCR “hoe het DNA in een cel wordt verdubbeld”
De PCR reactie.
Andere vectoren Genomische DNA bank cDNA synthese PCR
Expressie van het DNA De translatie vindt plaats in het cytoplasma.
Biologische Labcourse Nanobiologie NB1061 deel 2   Basistechnieken Microscopie, Microbiologie en Moleculaire Biologie Week 9  
Presentatie titel Rotterdam, 00 januari 2007 Cursus Genklonering GKL11 Les3: expressievectoren Rotterdam, september 2010.
Presentatie titel Rotterdam, 00 januari 2007 GKL11 Cursus genklonering Rotterdam, september 2008.
Genklonering Presentatie titel Cursus GKL11 Les2: kloneervectoren
DNA-replicatie.
B4 TRANSCRIPTIE. DEZE LES Uitleg B4 Transcriptie Nakijken opdrachten B3 Opdrachten maken B4.
Genetisch testen Dirk Jan Boerwinkel Freudenthal Instituut voor didactiek van wiskunde en natuurwetenschappen DNA lab dag 9 maart 2012.
Noonan syndroom: nieuwe ontwikkelingen Ineke van der Burgt Klinische genetica UMC st Radboud Nijmegen.
Door: Lucas Veugelaers en Kimberley van der Linde Patiënt tevredenheidonderzoek.
Vergelijking van twee commerciële Kleihauer-Betke kleuringen voor bepaling van foetaal bloed Lindsay Vanhuyse Stagementor: Apr. Eline Verhoye Stagebegeleider:
LES 1:Basis van Genetica
Student: Ilse Brouckaert Stagementor: Dr. Inge Van haute & Apr. Stefanie Desmet Promotor: Anneleen Cottyn Stageplaats: AZ Delta.
Evaluatie van een genotypische test voor detectie van polymorfismen in het integrase gen van verschillende HIV-1 subtypes De Ruddere Annelies.
PCR Puzzel Instructies. Begin van de les Heb het volgende voorin de klas: Template.
Validatie Factor II mutatie en Factor V Leiden met GeneXpert
RNA-Seq data-analyse pipeline integratie in GALAXY Van Middelem Robin.
Bepaling van de microbiële diversiteit op mariene sedimenten via DGGE profielen voor het bepalen van de mogelijke impact van antropogene activiteiten Howest.
Student: Jana Defever Stageplaats: UZ Gent (ARG) Stagebegeleidster: Cottyn A. Stagegever: Tilleman K. Stagementor: De Roo Chloë Laser capture microdissection.
Student: Sieglinde Pattyn Stagementor: Dr. N. De Wever
Bachelorproef biomedische laboratoriumtechnologie
Erfelijkheid genetica
Effect van temperatuursfluctuaties op populatieontwikkeling en co-existentie van cryptische nematodensoorten Titel van mijn bachelorproef: … Stage uitgevoerd.
Metabolisatiestudie van methyldienolone en methyltrienolone aan de hand van het in vivo chimeer uPA+/+-SCID muismodel en in vitro humane lever microsomen.
Bachelorproef Academiejaar Cédryck Pauwels FBT
Fokkerij 1.1 Wat is genetica?.
Wat is genetica? (hfdst 1 van ELF)
Fokkerij 1.1 Wat is genetica?.
Wat is genetica? (hfdst 1 van ELF)
CSI Oldenzaal.
Mini-conferentie vavo-netwerk 31 oktober 2016
Fokkerij 1.1 Wat is genetica?.
Ontwikkeling en validatie van microsatellieten voor de soort Dictyota dichotoma (Dictyotales, Phaeophyceae) Dewilde Frederik Universiteit Gent Onderzoeksgroep.
Inteelt en genomische informatie
Transcript van de presentatie:

Verdere optimalisatie van het Ford-project voor het gebruik van Next-generation sequencing in de moleculaire diagnostiek. Bachelorproef - Liselotte Vergote Centrum Medische Genetica Gent Stagementor: Mevrouw Kathleen Claes Promotor: Mevrouw Griet Vanbillemont

Inhoudsopgave  Ford-project  CFTR, HFE en MTHFR  Validatie van Ford-assays  Next-generation Sequencing  Resultaten CFTR, HFE en MTHFR  SNP’s in Ford-primers  Besluit

Ford-project  Geautomatiseerde workflow  Standaard procedure  Reductie van de prijs  Uitvoerbaar door iedereen

Ford-project Werkwijze ‘voor’ Ford  Buffer, dNTP’s, MgCl 2, Taq- polymerase, DNA en primers  primermix  Verschillende PCR-programma’s  Voor mutatiescreening van elk gen is een apart protocol en specifieke detectiemethoden Werkwijze met Ford  Kapa Robust mastermix, DNA en primers  primermix  1 PCR programma  De mutaties in genen kunnen via de Ford-workflow geanalyseerd worden

Ford-project PCR uitvoeren met alle gevalideerde Ford-assays voor het te analyseren gen Controle amplificatie via de Labchip Gx poolen van alle PCR amplicons per patiënt Poolen per index Poolen van alle index pools in een sequencing pool Sequeneren met MiSeq Sequencer analyse van de data

CFTR, HFE en MTHFR  Nog niet geïntegreerd in de Ford-workflow  Ford-assays moeten ontwikkeld en gevalideerd worden

CFTR, HFE en MTHFR  Opgespoorde mutaties in het HFE-gen (hemochromatose):  c.845G>A (assay 1)  c.187C>G (assay 2)  c.193A>T (assay 2)  Opgespoorde mutaties in het MTHFR-gen (trombofilie):  c.677C>T (assay 1)  Opgespoorde mutaties in het CFTR-gen (mucoviscidose):  Top 50 mutatielijst (21 assays)

Ford-project  MTHFR assay 1: c.677C>T in exon 4  AAGAACTCAGCGAACTCAGCACTCCACCCAGAGCCCCCAGCCTGTGC GAGGACGGTGCGGTGAGAGTGGGGTGGAGGGAGCTTATGGGCTCTCCT GGGCCCCTCAC CTGGATGGGAAAGATCCCGGGGACGATGGGGCAAGTG ATGCCCATGTCGGTGCATGCCTTCACAAAGCGGAAGAATGTGTCAGCCTCA AAGAAAAGCTGCGTGATGATGAAATCGRCTCCCGCAGACACCTTCTCCTTCA AGTGCTTCAGGTCAGCCTCAAAGCTCCCTGCTTCGGGGTGGCCTTTG GGGTA ACCTGCCAATAGGGATGACAGTCAGGAGAGG

Validatie van Ford-assays

Detectie van mutaties in het CFTR-gen  Momenteel wordt er gebruik gemaakt van de commerciële kits van INNOLiPA (35 mutaties)

Detectie van mutaties in het HFE- en MTHFR-gen  Mutatiescreening via High Resolution Melting Curve Analysis met LightScanner®  Gebruik van fluorescerende kleurstof LC Green

Detectie van mutaties in het HFE- en MTHFR-gen  Assymetrische PCR met ongelabelde probes  Probe is complementair aan de streng met de mutatie  Sterkere binding = hogere smelttemperatuur

CFTR, HFE en MTHFR  32 DNA controlestalen voor CFTR, 10 DNA controlestalen voor HFE en MTHFR  PCR uitvoeren volgens de Ford-condities en laten sequeneren via Next- generation sequencing met MiSeq

Sanger Sequencing

Next-generation Sequencing  Library Preparation  Cluster generation  Sequencing by synthesis

Next-generation Sequencing

Resultaten CFTR, HFE en MTHFR  Gevonden mutaties via screening in de gewone diagnostiek vergelijken met mutaties gevonden met MiSeq Komen mutaties gevonden in diagnostiek en met MiSeq overeen? CFTR HFE MTHFR

Ford-project

SNP’s in Ford-primers  Theoretisch geen SNP’s in de laatste 5 nucleotiden AAGAACTCAGCGAACTCAGC  Afspraak in het CMGG: geen SNP’s in de laatste 12 nucleotiden AAGAACTCAGCGAACTCAGC  Primer bevat SNP  risico op allele drop-out  Primers met gedegenereerde base

SNP’s in Ford-primers  Ford-condities  nog altijd allele drop-out  Annealingstemperatuur: 60°C  optimale temperatuur bepaald per Ford- assay  Annealingstijd: 10 seconden  35 seconden

Ford PCR-programma TijdTemperatuurCycli Activatie3 minuten95°C1 Denaturatie15 seconden95°C 35 Annealing10 seconden60°C Elongatie15 seconden72°C Finaal1 minuut72°C1

BRCA en BRCA  SNP c.3119G>A in reverse primer

BRCA en BRCA  Mutatie c.3481_3491del homozygoot zichtbaar

BRCA en BRCA  Bij optimale annealingstemperatuur 54,3°C

BRCA en BRCA  Resultaten bij 54°C

BRCA en BRCA  Bij verlengde annealingstijd (35 seconden)

Resultaten aangepaste condities Gewone Ford-assay Ford-assay met gedegenereerde base SERPINF1---5SERPINF1---9 Optimale temperatuur (55,3°C en 59,2°C) Heterozygoot Verlengde annealingstijdLicht heterozygoot Heterozygoot BRCA1---17BRCA Optimale temperatuur (54,3°C) Heterozygoot Verlengde annealingstijdLicht heterozygoot BRCA1---20BRCA Optimale temperatuur (57,4°C) Licht heterozygoot Heterozygoot Verlengde annealingstijd HomozygootHeterozygoot

SERPINF1---5 en SERPINF1---9

BRCA en BRCA1---35

BRCA en BRCA1---52

Besluit Validatie CFTR, HFE en MTHFR voor Ford-workflow  Verkregen mutaties CFTR, HFE en MTHFR komen overeen  Installeren softwarefilters + cut-off waarde bepalen

Besluit SNP’s in primers  Verlagen annealingstemperatuur  positieve invloed, niet toepasbaar in Ford-workflow  Verlengen annealingstijd + gedegenereerde base  minder risico op allele drop-out  aanpassen in Ford-workflow

Verdere optimalisatie van het Ford-project voor het gebruik van Next-generation sequencing in de moleculaire diagnostiek. Bachelorproef - Liselotte Vergote